Innerhalb der ersten Woche nach Symptombeginn wird die qRT-PCR als verlässliches Verfahren zum Nachweis einer SARS-CoV-2 Infektion eingesetzt und im weiteren Verlauf der Infektion ist die Kombination von qRT-PCR- und Antikörpertests für eine genaue Diagnose optimal ^{[1, 2, 3, 4, 5]}. Die diagnostische Sensitivität wird durch die Kombination von IgM Nachweisen mit qRT-PCR auf 98,6% erhöht – im Vergleich zur ausschließlichen Absicherung einer COVID-19 Erkrankung mittels qRT-PCR (51,9%) ^[3].

Der alleinige Einsatz eines Antikörpernachweis gewinnt besonders für die späteren Stadien der Infektion an Bedeutung, in denen das Virus aufgrund der Immunantwort des Wirts bereits eliminiert wurde ^[6]. Aktuellen Empfehlungen der kassenärztlichen Bundesvereinigung zufolge, ist es sinnvoll Antikörpertests ab zwei Wochen nach Symptombeginn einzusetzen ^[7].

Zusätzlich zur diagnostischen Bedeutung von Antikörpertests können diese für epidemiologische Zwecke eingesetzt werden um Individuen zu identifizieren, die nach Infektion eine Immunität entwickelt haben, die vor einer späteren Reinfektion schützen könnte ^[8], sowie das Ausmaß der Virusverbreitung und die Immunität einer Population auf gesellschaftlicher Ebene zu definieren und zu überwachen.

^[1] To KK et al. Articles Temporal profiles of viral load in posterior oropharyngeal saliva samples and serum antibody responses during infection by SARS-CoV-2 : an observational cohort study. Lancet Infect Dis 2020;3099:1–10.

^[2] Jia X. et al., “Clinical Significance of IgM and IgG Test for Diagnosis of Highly Suspected COVID-19 Infection“, preprint (Infectious Diseases (except HIV/AIDS), March 3^rd 2020)

^[3] Guo L. et al., “Profiling Early Humoral Response to Diagnose Novel Coronavirus Disease (COVID-19)“, Clinical Infectious Diseases, March 21^st 2020,

^[4] Nisreen M.A. Okba et al., “SARS-CoV-2 Specific Antibody Responses in COVID-19 Patients“, preprint (Infectious Diseases (except HIV/AIDS), March 20th 2020)

^[5] Amanat F. et al., “A Serological Assay to Detect SARS-CoV-2 Seroconversion in Humans“, preprint (Allergy and Immunology, March 18th 2020)

^[6] Zou L, et al. SARS-CoV-2 Viral Load in Upper Respiratory Specimens of Infected Patients. N Engl J Med 2020.

^[7] kassenärztlichen Bundesvereinigung https://www.kbv.de/html/1150_46092.php

^[8] Bao L, et al. Reinfection could not occur in SARS-CoV-2 infected rhesus macaques. bioRxiv 2020:2020.03.13.990226.

Derzeit gehen Experten davon aus, dass genesene Patienten nur ein geringes Risiko haben, ein zweites Mal an COVID-19 zu erkranken. Erste Studien haben gezeigt, dass Personen nach durchgemachter SARS-CoV-2-Infektion spezifische Antikörper entwickeln, die das Virus in Labortesten neutralisieren können. Zum jetzigen Zeitpunkt ist allerdings unklar, wie robust und nachhaltend dieser Immunstatus aufgebaut wird und ob es möglicherweise von Mensch zu Mensch Unterschiede gibt. Die Erfahrungen mit anderen Coronavirus-Erkrankungen wie SARS und MERS deuten darauf hin, dass ein zumindest partieller Immunstatus bis zu drei Jahre anhalten könnte. Um diesen Aspekt für COVID-19 Erkrankungen genau bewerten zu können, sind serologische Längsschnittstudien erforderlich, die den Immunstatus von Rekonvaleszenten über einen längeren Zeitraum beobachten ^[1].

^[1] RKI https://www.rki.de/SharedDocs/FAQ/NCOV2019/gesamt.html

Um bestmögliche diagnostische Eigenschaften zu erzielen wird für den IgA und IgM Test eine Mischung aus rekombinanten hochaufgereinigtem Nucleoprotein sowie S-Protein von SARS-CoV-2 verwendet. Für den spezifischen IgG Test wird ausschließlich das S-Protein eingesetzt.

Jüngste Studien zeigten, dass das Nucleoprotein eine frühe Detektion von Antikörpern vor allem bei milden Infektionsverläufen ermöglicht, während das S-Protein durch seine geringere Konservierung innerhalb der Virusfamilie Coronaviridae eine sehr spezifische Diagnostik erlaubt. Durch Kombination beider Antigene ist es Virion\Serion gelungen ELISA Teste für den Nachweis von IgA und IgM-Antikörpern zu entwickeln, die unserem Anspruch auf eine bestmögliche Leistung hinsichtlich Sensitivität und Spezifität gerecht werden.

Das S-Protein auf der Oberfläche von SARS-CoV-2 ist ein vielversprechendes Ziel für einen Impfstoff, da es als Oberflächenantigen leicht zugänglich und in seiner Funktion entscheidend für die Interaktion mit der humanen Zelle ist. Durch Bindung an den humanen ACE2 Rezeptor verschafft sich das Virus so Zugang in die Zelle. Weiterhin ist bekannt, dass neutralisierende Antikörper maßgeblich gegen Bestandteile des S-Proteins gebildet werden ^[1]. Daher basiert ein Großteil der aktuell in klinischen Studien befindlichen Impfstoffe auf SARS-CoV-2 S-Proteinen.

Da im SERION ELISA agile SARS-CoV-2 IgG das S-Protein von SARS-CoV-2 verwendet wird, ist die Grundlage gegeben, Antikörper, die aufgrund einer Impfung gebildet werden zu detektieren. Ob diese erfassten Antikörper eine neutralisierende Wirkung haben und somit einen Immunschutz erzeugen, ist generell mit serologischen Testsystemen auch für andere Erreger aufgrund der Methodik nur schwer zu beantworten. Hierfür müssen ausreichende wissenschaftliche Studien sowie standardisierte Referenzmaterialien und Empfehlungen unabhängiger Institutionen zur Verfügung stehen.

^[1] Meyer B., Drosten C., and Müller M., “Serological Assays for Emerging Coronaviruses: Challenges and Pitfalls”, Virus Research 194 (December 2014)

SERION ELISA control SARS-CoV-2 IgA und IgG sind bereits verfügbar.

Für den SERION ELISA agile SARS-CoV-2 können Serum oder Plasmaproben verwendet werden. Sputum, Kot, Urin ist nicht geeignet.

Der SERION ELISA agile SARS-CoV-2 kann sowohl manuell als auch mit unserem 4-Platten ELISA Vollautomat SERION Immunomat sowie vergleichbaren Automaten abgearbeitet werden.

Hier erfahren sie mehr über die verfügbaren SARS-CoV-2 Antigene als Rohmaterial für die Entwicklung von IVD Testen.

SERION Immunologics bietet ein breites Angebot an Rohmaterialien für in-vitro Diagnostika. Die rekombinanten SARS-CoV-2 Antigene wurden für die Entwicklung von ELISA und Partikel-basierten Testsystemen wie CLIA getestet, können aber auch für die Entwicklung von lateral-flow Tests (LF) verwendet werden.